AUTOMACS系统自动分选体系分选小鼠CD4+、CD25+抑制性细胞，由此方法得到的阴性细胞（CD4+、CD25-）可用作反应细胞或对照细胞。
实验材料：
1.小鼠；
2.HBSS洗涤缓冲液；
3.MACS缓冲液；
4.CD8a（Ly-2）磁珠；
5.结合缓冲液；
6.biotin-抗CD25（7D4）；
7.Streptavidin-PE；
8.抗PE磁珠；
9.完全RPMI培养基；
10.小鼠CD3+T细胞富集柱和1×纯化柱缓冲液；
11.15ml离心管，无菌；
12.autoMACS系统和分选柱；
13.30mm尼龙网或40mm预分离滤膜。
实验方法：
1.用20只小鼠的淋巴结制备单细胞悬液并去除红细胞。
2.将细胞在20mlHBSS洗涤缓冲液中混悬后用血细胞计数器计数。
3.将细胞悬液在4℃，200g离心10min。离心过程中，准备3支小鼠CD3+T细胞纯化柱，按说明书的指导用1×纯化柱缓冲液洗3遍。弃洗脱液，在每支纯化柱下方放置一支15ml离心管。
4.用3ml 1×纯化柱缓冲液和3ml HBSS洗涤缓冲液混悬细胞。将细胞通过30mm尼龙网或40mm预分离滤膜后，每支纯化柱中加入2ml细胞。室温孵育15min。
5.用2ml 1×纯化柱缓冲液洗涤纯化柱4或5遍以洗脱T细胞。用血细胞计数器计数后，将细胞悬液在4℃，200g离心10min。
6.将沉淀按每108个细胞加0.9ml MACS缓冲液的比例混悬。每108个细胞加入0.1ml CD8a（Ly-2）磁珠后4℃孵育15min。
7.4℃，200g离心10min。
8.以MACS缓冲液混悬细胞，使细胞浓度达到108个细胞/ml。将细胞通过30mm尼龙网或40mm预分离滤膜。将细胞放到autoMACS的上样通道。选择depletes程序（CD4+ T细胞将从阴性通道洗脱。
9.回收细胞计数，在4℃，200g离心10min。
10.用结合缓冲液混悬细胞使其浓度达到108个细胞/ml。每108个细胞加入15mg biotin-抗CD25（7D4）。4℃孵育15min。4℃，200g离心10min。
11.用结合缓冲液混悬细胞使其浓度达到108个细胞/ml。每108个细胞加入7.5mg Streptavidin-PE。4℃孵育15min。
12.4℃，200g离心10min.
13.用MACS缓冲液混悬细胞使其浓度达到108个细胞/ml。每108个细胞加入0.1ml 抗PE磁珠。4℃孵育15min。
14.4℃，200g离心10min。
15.用MACS缓冲液混悬细胞使其浓度达到108个细胞/ml。将细胞放到autoMACS的上样通道。选择posseld程序（CD4+ CD25+细胞将从阳性通道洗脱，CD4+ CD25-细胞将从阴性通道洗脱。
